Streptavidin Agarose Resin 6FF是一种生物素或生物素化的蛋白、抗体等物质的纯化树脂，其作用原理是基于链霉亲和素与生物素之间的相互作用，将链霉亲和素高度交联于6%琼脂糖上，独特的制备工艺使其具有更高的物理化学特性，可以耐受更高的压力，在相对较高的流速下，实现对目的蛋白的纯化，更适于工业大规模蛋白的纯化。
由于链霉亲和素与生物之间的亲和力很强，纯化时需要在变性条件下洗脱；而链霉亲和素对亚氨基生物素的亲和力相对较弱，可以在 pH 9.5-11.0 结合，pH 4.0 时洗脱，不需要使用变性剂，所以能更好的保持亲和素偶联物的活性。
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| 基质（Matrix） | 高度交联的6%琼脂糖微球 |
| 配体（Ligand） | 链霉亲和素 |
| 粒径（Bead size） | 45-165 µm |
| 载量（Capacity） | ＞200 nmol Biotin/mL介质 |
| 最大压力（PressureMax） | 0.3 MPa，3 bar |
| pH稳定范围（pH range） | 2-10 |
| 储存缓冲液（Buffer） | 20%乙醇 |
冰袋运输。4℃保存，有效期2年。
Q:大概可结合多少蛋白？
A: 结合生物素化BSA载量约4mg/ml介质。
Q：为什么上样之前用 0.22 µm 或 0.45 µm 滤膜过滤？
A：减少杂质以防阻塞柱子。
Q：底筛板上有气泡的话是否还可以继续实验？
A：最好不要，可轻轻搅拌填料或者敲打层析柱以排除气泡。
Q：为什么电泳无条带？
A：由于盐酸胍的带电性强，会中和 SDS 的电荷，影响后面蛋白在上样缓冲液里的带电性能，电泳时产生沉淀，导致无法电泳。因此后续可以对样本进行透析或者盐析（透析可利用透析袋，PBS 作为透析液，透析两次，每次 1 小时，透析液的体积可控制在样本的 100 倍）。
Q：该产品使用后需要用什么清洗？
A：一般用 2 倍柱体积的 0.1 M NaOH 或 6 M 盐酸胍或 8 M 尿素溶液进行清洗，然后
立即用 5 倍柱体积的 PBS，pH 7.4 清洗，来去除一些沉淀或变形物质；用 3-4 倍柱体积的 70%乙醇或 2 倍柱体积 1% Triton X-100 清洗，然后立即用 5 倍柱体积的 PBS， pH 7.4 清洗，来去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质。
Q：该产品的主要应用是什么？
A：主要是用于固定生物素化抗原纯化抗体或者固定生物素化抗体纯化抗原。如果用于纯化生物素的蛋白，只能在变性的条件下洗脱下来。纯化亚氨基生物素标签蛋白可以在非变性的条件下洗脱。
Q：孵育法纯化的步骤？
A:1)根据纯化的样品量，取适量填料加入离心管中，1000 rpm离心1min，吸弃上清；
- 向离心管中加入5倍介质体积的平衡液清洗介质，1000 rpm离心1min，吸弃上清; 重复两次以上。
- 加入样品，封闭离心管，4℃振荡孵育2-4 h或者37℃孵育30 min-2 h。
- 孵育结束后，1000 rpm离心1min，吸弃上清，上清保留作为流穿，用于电泳鉴定。
- 用5倍介质体积的洗杂液清洗介质，1000rpm离心1min，去除上清 (注意不要吸到介质) ，重复3-5次，中间建议换新离心管。
- 直接在凝胶中加loading buffer,煮沸，离心，取上清跑胶。
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